Ĉi tiu studo montras, ke la radik-asociita fungo *Kosakonia oryziphila* NP19, izolita el rizradikoj, estas promesplena biopesticido kaj biokemia agento por la kontrolo de rizeksplodo. *In vitro* eksperimentoj estis faritaj sur freŝaj folioj de aromaj rizplantidoj *Khao Dawk Mali 105* (KDML105). La rezultoj montris, ke NP19 efike inhibis la ĝermadon de konidioj de rizeksplodo. Funga infekto estis inhibiciita sub tri malsamaj traktadkondiĉoj: rizinokulado per NP19 kaj fungaj konidioj; samtempa foliinokulado per NP19 kaj fungaj konidioj; kaj foliinokulado per fungaj konidioj sekvata de NP19-traktado 30 horojn poste. Krome, NP19 reduktis fungan hifan kreskon je 9,9–53,4%. En poteksperimentoj, NP19 pliigis la aktivecojn de peroksidazo (POD) kaj superoksida dismutazo (SOD) je 6,1% ĝis 63,0% kaj je 3,0% ĝis 67,7%, respektive, indikante plibonigitajn defendmekanismojn de la plantoj. Kompare kun neinfektaj NP19-kontroloj, NP19-infektaj rizplantoj montris pliiĝon en la pigmentenhavo je 0,3%–24,7%, la nombron de plenaj grajnoj po paniklo je 4,1%, la rendimenton de plenaj grajnoj je 26,3%, la masan indicon de la rendimento je 34,4%, kaj la enhavon de la aroma kombinaĵo 2-acetil-1-pirolino (2AP) je 10,1%. Ĉe rizplantoj infektitaj kaj per NP19 kaj per blastosiropo, la pliiĝoj estis 0,2%–49,2%, 4,6%, 9,1%, 54,4%, kaj 7,5%, respektive. Kampaj eksperimentoj montris, ke rizplantoj koloniigitaj kaj/aŭ inokulitaj per NP19 montris pliiĝon en la nombro de plenaj grajnoj po paniklo je 15,1–27,2%, plenan grajnan rendimenton je 103,6–119,8%, kaj 2AP-enhavon je 18,0–35,8%. Ĉi tiuj rizplantoj ankaŭ montris pli altan SOD-aktivecon (6,9–29,5%) kompare kun rizplantoj infektitaj per eksplodo ne inokulitaj per NP19. Postinfekta folia apliko de NP19 malrapidigis la progreson de lezoj. Tiel, K. oryziphila NP19 montriĝis esti potenciala plantkreskiga bioagento kaj biopesticido por la kontrolo de rizeksplodo.
Tamen, la efikecon de fungicidoj influas multaj faktoroj, inkluzive de la formuliĝo, tempigo kaj metodo de apliko, la severeco de la malsano, la efikeco de sistemoj por prognozi malsanojn, kaj la apero de fungicid-rezistemaj trostreĉoj. Krome, la uzo de kemiaj fungicidoj povas kaŭzi restan toksecon en la medio kaj prezenti sanriskon por uzantoj.
En la pota eksperimento, rizsemoj estis surfacsteriligitaj kaj ĝermitaj kiel priskribite supre. Ili estis poste semitaj per K. oryziphila NP19 kaj transplantitaj en plantidujojn. La plantidoj estis inkubaciitaj dum 30 tagoj por permesi al rizplantidoj eliri. La plantidoj estis poste transplantitaj en potojn. Dum la transplantada procezo, la rizplantoj estis sterkitaj por prepari ilin por infekto kun la fungo, kiu kaŭzas rizploridon, kaj por testi ilian reziston.
En kampa eksperimento, ĝermintaj semoj infektitaj per Aspergillus oryzae NP19 estis traktitaj per la supre priskribita metodo kaj dividitaj en du grupojn: semoj infektitaj per Aspergillus oryzae NP19 (RS) kaj neinfektitaj semoj (US). Ĝermitaj semoj estis plantitaj en pletoj kun steriligita grundo (miksaĵo de grundo, bruligita rizŝelo kaj sterko en proporcio de 7:2:1 laŭ pezo) kaj kovitaj dum 30 tagoj.
oryziphila konidia suspendo estis aldonita al R-rizo kaj post 30 horoj da inkubacio, 2 μl da K. oryziphila NP19 estis aldonita al la sama loko. Ĉiuj Petri-pladoj estis inkubaciitaj je 25°C en mallumo dum 30 horoj kaj poste inkubaciitaj sub kontinua lumo. Ĉiu grupo estis ripetita tri fojojn. Post 72 horoj da inkubacio, plantsekcioj estis ekzamenitaj kaj submetitaj al skana elektrona mikroskopio. Mallonge, plantsekcioj estis fiksitaj en fosfat-bufrita salakvo enhavanta 2.5% (v/v) glutaraldehidon kaj senakvigitaj en serio de etanolaj solvaĵoj. Specimenoj estis kritika-punktaj sekigitaj per karbondioksido, poste orumitaj kaj observitaj sub skana elektrona mikroskopo dum 15 minutoj.
Afiŝtempo: 13 okt. 2025